Keyvisual NGS Next Generation Sequencing

Das Fundament für Ihr Next-Generation Sequencing (NGS)

10.09.2024

In den letzten zehn Jahren haben Next-Generation-Sequencing (NGS)-Technologien die Biologie und Medizin revolutioniert. Sie ermöglichen die umfassende Analyse von Genomen (DNA) und Transkriptomen (RNA), die Identifizierung von Sequenzvariationen im Hochdurchsatz und die Einzelzellanalyse. Dadurch bieten sie neuartige Einblicke in die Struktur, Funktion und Variabilität des Genoms und fördern Fortschritte in der Genomik, personalisierten Medizin und Evolutionsbiologie.

Neues eBook

Sample Preparation for NGS

Unser eBook „Sample Preparation for Next-Generation Sequencing“ bietet ausgewählte Applikationen unserer Produkte zu den Themen manuelle Bibliothekskonstruktion und teilweise Automatisierung der Bibliotheksvorbereitung. Erhalten Sie alle notwendigen Informationen für Ihre Sequenzierungsherausforderungen.

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Die Erstellung von Bibliotheken für Sequenzierung bildet die Grundlage einer erfolgreichen NGS-Anwendung. Dabei werden modifizierte DNA- oder RNA-Fragmente in ein für die Sequenzierung geeignetes Format gebracht. Der gesamte Sequenzierungsprozess und die anschließende bioinformatische Analyse werden von der Qualität dieser Bibliotheksvorbereitung beeinflusst. Durch sorgfältige Bibliotheksvorbereitung kann das Sequenzierungsergebnis optimiert, technische Verzerrungen oder Artefakte, die den Sequenzierungsprozess beeinflussen können, minimiert und die Sequenzabdeckung verbessert werden, insbesondere bei wertvollen Probenmaterialien.

Probenvorbereitung für NGS-Bibliotheken – Schritt für Schritt

  • Fragmentierung: Neben Ultraschallbehandlung und mechanischer Scherung bietet die enzymatische Fragmentierung eine spezifischere und schonendere Alternative.
  • Reverse Transkription: Die Reverse Transkription ist ein enzymatischer Prozess, der in einem Thermocycler durchgeführt wird. Dieser Prozess ist entscheidend für die Umwandlung von RNA in komplementäre DNA (cDNA), die dann für die Sequenzierung verwendet werden kann. Unabhängig von der verwendeten Sequenzierungstechnologie umfasst die Bibliotheksvorbereitung oft mehrere Schritte.
  • Endreparatur: Dieser Prozess beinhaltet die Erstellung stumpfer Enden der DNA-Fragmente, um sie für die Ligation der Sequenzierungsadaptern kompatibel zu machen.
  • Adapter-Ligation: Adapter für die Sequenzierung werden an die Enden der DNA-Fragmente angefügt, um eine komplementäre Bindung an die Durchfluss-Zelle für die Sequenzierungsplattform zu ermöglichen.
  • Indexing/Barcoding: Probenspezifische kurze Indizes werden jeder Bibliothek hinzugefügt, um nach der Sequenzierung alle Proben für die bioinformatische Analyse zu differenzieren. Diese Indizes können auch für die Multiplex-Sequenzierung verwendet werden, um mehrere Proben in einem Durchlauf mit mehreren Kombinationen verschiedener Indexsequenzen zu parallelisieren.
  • Amplifikation: Die Anreicherung von Bibliotheken durch PCR wird verwendet, um eine für die Sequenzierung geeignete Konzentration zu generieren.
  • Größenselektion/Aufreinigung: Die geeigneten DNA-Fragmente werden größenspezifisch ausgewählt und aufgereinigt, um qualitativ hochwertige Bibliotheken zu gewährleisten.
  • Qualitätskontrolle: Die vorbereiteten Bibliotheken werden auf Konzentration und Größenverteilung überprüft.
  • Normalisierung & Pooling: Die Bibliothekskonzentrationen werden normalisiert und gepoolt, um die gleichzeitige Sequenzierung mehrerer Proben zu ermöglichen.

Nukleinsäureextraktion als erster Schritt

Die Extraktion stellt den ersten Schritt dar, bei dem die DNA- oder RNA aus ihren biologischen Matrizen freigesetzt werden, um die nachfolgende Weiterverarbeitung zu erleichtern. Dieser entscheidende Schritt beeinflusst nicht nur den Ertrag und die Reinheit der extrahierten Nukleinsäuren, sondern hat auch einen erheblichen Einfluss auf die Fragmentgrößen, welche die NGS-Anwendung definieren und die Qualität der Bibliotheken bestimmen. Die Reinheit dieser Nukleinsäuren ist entscheidend für die Zuverlässigkeit der Sequenzierungsergebnisse, was die Bedeutung der Investition in optimale Laborausrüstung und Methoden unterstreicht.

Die Effizienz der Nukleinsäureextraktion bestimmt die Ausbeute an DNA oder RNA, der aus biologischen Proben gewonnen wird. Eine hohe Ausbeute gewährleistet eine ausreichende Menge an genetischem Material für nachfolgende Anwendungen, während die Reinheit den Grad an Verunreinigungen widerspiegelt, die die Sequenzierungsergebnisse verfälschen können. Effektive Extraktionsprotokolle werden angewendet, um Ausbeute und Reinheit zu maximieren und die Integrität des genetischen Materials für eine genaue Sequenzierung zu gewährleisten. Darüber hinaus zeigt die Wahl zwischen kurzen- und langen Fragmentgrößen für die Sequenzierung die Anpassung von Vorbereitungsprotokollen der Bibliotheken für spezifische Anwendungen auf. Während der Extraktion kann es zu unbeabsichtigter Fragmentierung von DNA oder RNA kommen, die die Verteilung der Fragmentgrößen in den Bibliotheken beeinflussen.

Methoden der Nukleinsäureextraktion

Die Löslichkeit von Nukleinsäuren beeinflusst deren Extraktionseffizienz, insbesondere in wässrigen oder organischen Phasen während der Phasentrennung. Darüber hinaus können Nukleinsäuren während der Extraktion an verschiedene Materialien binden, wie z.B. Festphasenmatrizen oder magnetische Beads. Bead-basierte Extraktionsmethoden haben aufgrund ihrer Automatisierungsmöglichkeiten und ihrer Kompatibilität mit Hochdurchsatz-Workflows an Beliebtheit gewonnen. Diese Methoden bieten Zuverlässigkeit, Reproduzierbarkeit und Skalierbarkeit und sind daher unverzichtbare Werkzeuge in der modernen NGS-Bibliotheksvorbereitung.

Durch die Verwendung eines automatisierten Liquid Handlers wie dem CyBio FeliX können verschiedene Protokolle, einschließlich Bead-basierter Extraktion und Spitzenextraktion, nahtlos in Bibliotheksvorbereitungen integriert werden. Die Automatisierung repetitiver Pipettieraufgaben minimiert menschliche Fehler und maximiert den Durchsatz, wodurch konsistente Extraktionsergebnisse über alle Proben hinweg sichergestellt und das Tempo sowie die Qualität der Bibliotheksvorbereitung beschleunigt werden.

Auswirkungen der Sequenzierungsmethode auf die Bibliotheksvorbereitung

Die gewählte Sequenzierungstechnologie bestimmt den Vorbereitungsprozess der Bibliotheken entweder für die Sequenzierung von typischerweise 50 bis 300 bp kurzen Fragmenten oder für die Sequenzierung langer bzw. ganzer DNA-Moleküle mit bis zu Mbp Länge. Die Fragmentgröße spielt dabei eine entscheidende Rolle bei der Bibliotheksvorbereitung, da sie bestimmt welche Nukleinsäuren für welche Sequenzierung geeignet sind. Durch die Auswahl von Faktoren wie Fragmentierungsmethode und Inkubationszeit können Extraktionsprotokolle angepasst werden, um die gewünschte Fragmentgröße zu erreichen und so die Sequenzierungsergebnisse zu optimieren.

Darüber hinaus bedingt der Anwendungsbereich und der Typ der Nukleinsäure (DNA oder RNA) die notwendigen Schritte der Bibliotheksvorbereitung. Die zielgerichtete Sequenzierung konzentriert sich etwa auf spezifische Bereiche des Genoms, wodurch der Umfang der Datenanalyse begrenzt aber gleichzeitig Zeit und Kosten reduziert werden. Dies ermöglicht eine Sequenzierung mit einem viel höheren Abdeckungsgrad, da der Fokus auf kleineren und spezifischen Regionen des Genoms liegt. Daher erfordert die zielgerichtete Sequenzierung eine Amplifikation spezifischer Genfragmente oder Genpanels aus einem Genom. Im Gegensatz dazu bietet die Gesamtgenomsequenzierung (WGS) einen umfassenden Überblick über ein gesamtes Genom ohne potenzielle Verzerrungen durch PCR-Amplifikate und ist für ein breiteres Spektrum von Anwendungen geeignet.

Wichtige Parameter von Thermocyclern zur Sicherstellung einer optimalen Bibliotheksvorbereitung

Die Qualität der Sequenzierungsergebnisse hängt direkt von der Qualität der Bibliotheksvorbereitung ab. Alle Schritte der Bibliotheksvorbereitung erfordern eine präzise Temperaturgenauigkeit, für die PCR-Thermocycler perfekte Voraussetzungen bieten. Geeignete Thermocycler müssen dafür mehrere wichtige Parameter erfüllen:

  1. Präzise Temperaturkontrollsysteme: Eine präzise Temperaturkontrolle ist unerlässlich, um PCR-Verzerrungen und das Risiko unspezifischer Amplifikationen zu minimieren.
  2. Feinabstimmung der Reaktionsbedingungen: Temperaturüber und -unterschwinger, um die Zieltemperatur schneller zu erreichen, sollten vermieden werden, da sie ebenfalls zu unerwünschten Amplifikationen durch undefinierte Temperaturen führen können. Dies gewährleistet einen optimalen Ertrag durch Aufrechterhaltung der Enzymaktivität.
  3. High-Precision Smart Lid: Unabhängig von der Höhe des verwendeten Kunststoffmaterials sollte ein reproduzierbarer Deckelandruck im Thermocycler  ausgeübt werden. Dies minimiert das Risiko der Evaporation, gewährleistet beständige Reaktionsbedingungen und verhindert Kreuzkontaminationen.
  4. Temperaturgleichmäßigkeit: Eine Temperaturhomogenität über den gesamten Probenblock ist unerlässlich, um in allen Probenpositionen die gleichen Bedingungen zu gewährleisten und somit reproduzierbare Sequenzierungsbibliotheken zu erzeugen.
  5. Kompatibilität: Der Thermocycler sollte mit allen gängigen PCR-Verbrauchsmaterialien kompatibel sein, einschließlich spezieller Adapter, die in einigen Fällen bei der Einzelzellsequenzierung verwendet werden.
  6. Flexibilität: Der Austausch von Probenblöcken ist vorteilhaft, um bei wechselnder Probenanzahl und -volumina einfach und kostengünstig zu einem anderen Blockformat wechseln zu können.

Biometra Thermocycler sind perfekt an die Anforderungen für die NGS-Bibliotheksvorbereitung angepasst. Mit hoher Flexibilität durch verschiedene Modelle und Blockmodelle sind die Biometra Thermocycler für unterschiedliche Probendurchsätze und Prozessanforderungen geeignet. Sie sind mit fast allen handelsüblichen PCR-Verbrauchsmaterialien kompatibel. Besonders hervorzuheben ist, dass der Biometra TAdvanced der einzige PCR-Thermocycler auf dem Markt ist, der von 10x Genomics als kompatibel mit all ihren innovativen Methoden auf Einzelzellebene und in räumlicher Transkriptomik verifiziert wurde und empfohlen wird. Dies macht den Biometra TAdvanced zu einer zukunftssicheren Investition. Unter Berücksichtigung dieser wichtigen Aspekte gewährleistet der Biometra Thermocycler Reproduzierbarkeit, minimiert Verzerrungen und optimiert die Ausbeute, wodurch die Effizienz und Zuverlässigkeit der NGS-Bibliotheksvorbereitung verbessert werden.

"Unverzichtbar für unsere HLA-Diagnostik"

“Der Biometra TAdvanced Thermocycler, in Kombination mit einem Kit von GenDx, ist unverzichtbar für unsere HLA-Diagnostik. Die außergewöhnliche Präzision des TAdvanced ist hervorragend für unsere empfindlichen Anwendungen in der Stammzell- und Organspende geeignet. Diese Lösung bietet uns die Robustheit, Reproduzierbarkeit und Langlebigkeit, die wir benötigen.”

Dr. Volker Oberle, EFI-Direktor Transplantationsimmunologie, Universitätsklinikum Jena, Deutschland

Die Fragmentgrößenselektion und Aufreinigung

Die Größenselektion und Aufreinigung sind entscheidende Schritte, um suboptimale Nukleinsäurefragmente zu eliminieren. Die optimale Fragmentgröße für die Sequenzierungstechnologie und präzise bioinformatische Analysen variiert je nach gewähltem Instrument. Sequenziersysteme von Illumina™ arbeiten typischerweise mit Fragmentgrößen zwischen 200 und 500 Basenpaaren (bp). Die Effizienz der Sequenzierung kann durch die Fragmentgröße beeinflusst werden. Fragmente unter 150 bp können Adapter- und Primer-Duplexe begünstigen, die eine höhere Präferenz haben sich auf den Clustern einer Durchflusszelle stärker zu häufen als größere Fragmente, was zu verzerrten Daten von tatsächlichen kurzen Fragmenten führt. Die Größenselektion und Aufreinigung sind auch aus Kostensicht bedeutsam. Daher können optimierte Prozesse dazu beitragen, die Gesamtkosten der Sequenzierung zu senken.

Normalisierung und Pooling der Proben

Die Normalisierung ist ein entscheidender Schritt in der NGS-Bibliotheksvorbereitung, der sicherstellt, dass jede Bibliothek gleichmäßig vertreten ist und in ausreichender Tiefe sequenziert wird. Sie gleicht die Konzentrationen für das Multiplexing aus und vermeidet die Über- oder Unterrepräsentation von unterschiedlichen Proben. Eine Überrepräsentation kostet Kapazität auf der Durchflusszelle, während eine Unterrepräsentation zu einer schlechten Sequenziertiefe und einer ungenügenden Abdeckung führt, was möglicherweise wertvolle Proben verschwendet. Daher hilft die Normalisierung der Konzentrationen von NGS-Bibliotheken, konsistente und zuverlässige Ergebnisse auf kosteneffiziente Weise zu erzeugen.

Um Ressourcen zu sparen, können mehrere Bibliotheken gepoolt und im selben Lauf sequenziert werden. Das Kombinieren von Bibliotheken aus mehreren Proben in einem Lauf stellt die optimale Nutzung der Druchflusszelle sicher, was einen ökonomischeren Ablauf darstellt.

Sicherstellung von Reproduzierbarkeit und Optimierung

Die Aufrechterhaltung von reproduzierbaren NGS-Bibliotheksvorbereitungen ist entscheidend für zuverlässige Sequenzierungsergebnisse. Die Vorbereitung stellt anspruchsvolle Herausforderungen dar, von arbeitsintensivem manuellen Pipettieren bis hin zur Sicherstellung von Konsistenz und Skalierbarkeit. Manuelles Pipettieren verbraucht nicht nur wertvolle Zeit, sondern birgt auch das Risiko von Fehlern.

Der Pipettierroboter CyBio FeliX beseitigt Variabilität, indem er den Workflow automatisiert, reproduzierbare Ergebnisse sicherstellt und Zuverlässigkeit und Effizienz verbessert. CyBio FeliX bietet unvergleichliche Vorteile bei Aufgaben wie Größenauswahl und Normalisierung. Bei manueller Handhabung kann es schwierig sein, in diesen Parametern über viele Proben hinweg Einheitlichkeit zu erreichen, was zu Größenauswahlverzerrungen und verfälschten Ergebnissen führen kann. Mit CyBio FeliX kann die Notwendigkeit für wiederholte manuelle Pipettieraufgaben eliminiert werden, was “Walk-Away-Zeit” ermöglicht, während derer wertvolle Analysen und Aufgaben erledigt werden können, die Expertise erfordern.

Die Workflow-Automatisierung mit dem flexiblen CyBio FeliX reduziert die manuelle Arbeit in pipettierintensiven Schritten auf kleinem Raum. Das Verhältnis von Platzbedarf zu möglichen Anwendungen, beginnend bei der Nukleinsäureextraktion bis hin zum Bibliothekspooling, ist optimal. Bei variierenden Probennummern von Tag zu Tag kann an manchen Tagen die manuelle Verarbeitung nicht machbar sein. An anderen Tagen gibt es möglicherweise nur eine kleine Anzahl von Proben. CyBio FeliX bietet maximale Flexibilität: 1 bis 96 oder bis zu 384 Proben können verarbeitet werden.

Mit zunehmendem Probenvolumen wird Skalierbarkeit unerlässlich. Das modulare Design von FeliX ermöglicht eine nahtlose Skalierbarkeit, um wachsenden Anforderungen gerecht zu werden, ohne Effizienz oder Qualität zu opfern, und macht NGS-Workflows zukunftssicher.

Wichtige Qualitätskontrollen

In der NGS-Bibliotheksvorbereitung spielt die Qualitätskontrolle eine entscheidende Rolle, um den Erfolg der nachgelagerten Sequenzierungsprozesse sicherzustellen. Durch den Einsatz von qPCR zur genauen Quantifizierung und Gelelektrophorese zur Validierung der Fragmentgröße können Sie die Qualität und Quantität der DNA-Fragmente zuverlässig validieren und NGS-Workflows für zuverlässige und reproduzierbare Ergebnisse optimieren.

qPCR als Goldstandard für die Bibliotheksquantifizierung

qPCR wird weithin als Goldstandard für die Quantifizierung von DNA-Fragmenten in der NGS-Bibliotheksvorbereitung anerkannt. Sie wird nicht nur von Anbietern von NGS-Kit-Reagenzien unterstützt, sondern auch von Forschern weltweit als bevorzugte Methode anerkannt. Die Bestimmung der Bibliothekskonzentrationen mittels qPCR profitiert von einer präzisen Quantifizierung für die optimalen Normalisierungsfaktoren zwischen mehreren Proben, was zu optimalen Ergebnissen durch eine optimale Flow-Zell-Beladung führt. Darüber hinaus ist qPCR eine kosteneffiziente Technologie, die den Bedarf an Probenmaterial minimiert und unnötige Experimentwiederholungen verhindert, was Kosten reduziert, und eine optimale Ressourcennutzung ermöglicht.

Gelelektrophorese zur Validierung der Fragmentgröße

Die Gelelektrophorese dient als effektive Methode zur Überprüfung der DNA-Fragmentgrößen. Analytik Jena bietet Lösungen für jeden Durchsatz: Wählen Sie Gelelektrophorese-Systeme der Biometra Compact Line in den Größen S, M, Multi-Wide oder L entsprechend Ihren Bedürfnissen. Die Gelelektrophorese ist eine kosteneffiziente Methode, die es Ihnen ermöglicht, Ihre Ressourcen wirtschaftlich zu nutzen.

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Br NGS Library Preparation (EN)

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Infografik_NGS_001_2024_de

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Ancient Genomics: Semi-Automated High-Throughput Workflow for the Preparation of NGS Libraries (Poster)

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HLA Typing Using Long-Range PCR and Next-Generation Sequencing (EN)

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DNA Amplicon Library Preparation for Illumina® Sequencing (EN)

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Workflow for Preparation of NGS Libraries in Ancient Genomics (EN)

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Automated Purification of Plasmid DNA using Promega Wizard MagneSil Tfx™ System on the Analytik Jena CyBio FeliX Liquid Handler (EN)

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